熒光定量PCR技術(shù)是通過熒光染料或熒光標記的特異性探針，對PCR產(chǎn)物進行標記跟蹤，實時監(jiān)控反應過程。隨著PCR反應的進行，反應產(chǎn)物不斷累積，熒光信號強度也等比例增加。每經(jīng)過一個循環(huán)，收集一次熒光強度信號，這樣就可以通過熒光強度變化監(jiān)測產(chǎn)物量的變化，結(jié)合相應的軟件對產(chǎn)物進行分析，可以得到熒光擴增曲線，計算待測樣品初始模版的量。實時熒光定量PCR技術(shù)是一次由定性技術(shù)向定量技術(shù)的飛躍，運用該項技術(shù)，可以對DNA、RNA樣品進行相對定量、定量和定性分析。

　　PCR試劑盒產(chǎn)品及特點：

　　1.即開即用，用戶只需要提供腸賈第蟲樣品。

　　2.根據(jù)腸賈第蟲保守序列設計的專一性引物，與相關病毒無交叉反應。

　　3.靈敏度可以達到幾百拷貝/反應。

　　4.一管式熒光定量PCR檢測，避免后續(xù)污染。

　　5.PCR試劑盒足夠50次20μL反應體系的熒光定量PCR。

　　PCR試劑盒使用方法：

　　一、稀釋PCR陽性對照（以10E2-10E7拷貝/μL這6個10倍稀釋度為例）

　　1.注意：由于標準品濃度非常高，因此下列稀釋操作一定要在獨立的區(qū)域進行，千萬不能污染樣品或本試劑盒的其他成分）。為增加產(chǎn)品穩(wěn)定性和避免擴散傳染性病原，本產(chǎn)品不提供活體樣品做陽性對照，只提供可以直接使用的DNA片段作為陽性對照。

　　2.標記6個離心管

　　3.用帶芯槍頭分別加入45μL熒光PCR模板稀釋液（用帶芯槍頭，下同）。

　　4.在7號管中加入5μL1×10E8拷貝/μL的陽性對照，充分震蕩1分鐘，得1×10E7拷貝/μL的陽性對照。放冰上待用。

　　5.換槍頭，在6號管中加入5μL1×10E7拷貝/μL的陽性對照(上步稀釋所得)，充分震蕩1分鐘，得1×10E6拷貝/μL的陽性對照。放冰上待用。

　　6.換槍頭，在5號管中加入5μL1×10E6拷貝/μL的陽性對照到5號管中，充分震蕩1分鐘，得1×10E5拷貝/μL的陽性對照。放冰上待用。

　　7.重復上面的操作直到得到6個稀釋度的陽性對照。放冰上待用。

　　二、樣品DNA的制備

　　8.如果有N個樣品，必須設置N+2個提取，多出的一個是PC（樣品制備陽性對照），一個是NC（樣品制備陰性對照）。可以用10μL上步制備的PCR陽性對照的第4號（濃度為1×10E4拷貝/μL，10μL相當于1萬拷貝）或第5號（濃度為1×10E5拷貝/μL，10μL相當于10萬拷貝）再加上一定量的水使總體積跟每次制備要求的體積一樣，以此作為PC。另外用水作為NC。如果每次制備需要200μL樣品，則PC和NC的體積也必須是200μL。

　　9.用自選方法純化樣品的DNA，本試劑盒跟市場上大多數(shù)病毒DNA提取試劑盒兼容。

　　三、設置qPCR反應（20μL體系，在樣品制備室進行）

　　10.如果只做1次重復，則標記N+9個PCR管，其中N+2個用于上步得到的N+2個樣品，1個用于PCR陰性對照，6個用于PCR陽性對照。如果做2-3次重復，則反應設置數(shù)量相應增加2或3倍。

　　11.在標記管中按下表加入各成分（本表只列出一次重復。樣品管和陰性對照設置完畢后才設置陽性對照，并且陽性對照樣品要等所有管子蓋上蓋子儲存好后加。