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        NK細胞活性檢測方法

        點擊次數:2864 更新時間:2016-01-04

            NK細胞是一種異質性、多功能的細胞群,具有抗腫瘤、抗感染和免疫調節功能,并參與移植排斥反應和某些自身免疫性疾病的發生,因而通過制備NK細胞克隆對其功能進行研究已受到人們的高度重視。測定人NK細胞活性多以K562細胞株作為靶細胞,而測小鼠NK細胞活性則用YAC細胞株,檢測方法多種多樣。

        (一)形態法

            將效應細胞與靶細胞按一定比例混合溫育,繼而用臺盼藍或伊紅Y等活細胞拒染的染料處理,然后分別計數著染的死細胞和不著染的活細胞,推算NK細胞活性。

        1.材料

        (1)靶細胞:K562細胞株或YAC細胞株。

        (2)效應細胞:NK細胞。

        (3)含15%NCS的RPMI 1640培養液,5%臺盼藍染色液。

        2.方法:

        (1)效應細胞的制備:將克隆的NK細胞用含15%NCS的RPMI 1640培養液懸浮,計數后調整細胞濃度至l×107/ml,備用。

        (2)靶細胞的制備:取經24h培養的靶細胞,用RPMI 1640培養液洗滌1次,1000r/min離心6min。棄上清液,用:RPMI 1640培養液重懸后計數,并用0.5%臺盼藍染色計數,活細胞數達95%以上時可用作靶細胞。以RPMI l640培養液調整至1×105/ml,備用。

        (3)效應細胞靶細胞作用:用40孔培養板,對照組1~3孔,每孔加100μl靶細胞,再加入RPMI 1640培養液100μl;實驗組4~6孔,每孔加100gl靶細胞,再加入效應細胞100μl,效應細胞與靶細胞的比例為50:1。混勻,置5%CO2 37℃孵箱中培養過夜。

        3.結果分析取m培養板,將細胞輕輕混勻成懸液,從每孔中取出30μl細胞懸液,加等量O.5%臺盼藍染液混合。室溫下5min后,計數白細胞數。對照組和實驗組每孔各計數100個細胞,分別記錄死亡細胞和活細胞數,求出各組NK細胞活性的均值。

        (二)酶釋放法

            將效應細胞與靶細胞按一定比例混合溫育,離心沉淀,取上清液檢測靶細胞遭破壞后釋放出的酶含量。

        (三)熒光法

            用熒光素標汜靶細胞,經與效應細胞共溫后,離心去上清液,用熒光計檢測剩余的活靶細胞的熒光。

        (四)核素法

            將效應細胞與靶細胞按一定比例混合共溫后,離心檢測上清液或剩余靶細胞放射性的量,間接反映其活性。有靶細胞胞漿釋放法和胞核釋放法兩種。

        (五)化學發光法

            當效應細胞與靶細胞接觸時,效應細胞呼吸暴發,生成極不穩定的O 2-及OH一,放出光子,在發光劑存在條件下,可被光電倍增管接受和計數,發光量與NK細胞殺傷能力相關。

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